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试述内质网急性百草枯中毒大鼠内质网应激PERKeIF2aATF4通路变化与药物对其影响网

收藏本文 2024-02-09 点赞:9628 浏览:27006 作者:网友投稿原创标记本站原创

摘要:目的探讨大鼠急性PQ中毒后ERS时PERK-eIF2a-ATF4信号转导通路的变化;明确UTI和/或Sal对PERK-eIF2a-ATF4信号转导通路的影响及其对肺损伤的作用。策略实验选用由吉林大学实验动物中心提供Wistar大鼠350只,体重(250±10)g,雌雄各半。造模时将大鼠随机分为7组,每组各50只。A组:空白对照组,一次性给予1ml生理盐水灌胃。每日二次1ml生理盐水腹腔注射。B组:PQ染毒组,一次性给予PQ溶液40mg/kg灌胃造模。每日二次给予1ml生理盐水腹腔注射。C组:UTI治疗组,大鼠PQ中毒后给予UTI(12万iu/kg),每日二次腹腔注射。D组:Sal(0.5mg/kg)治疗组,大鼠PQ中毒后1、3、5天,每日一次给予Sal(0.5mg/kg)1ml腹腔注射,一次1ml生理盐水腹腔注射。E组:Sal(1.0mg/kg)治疗组,大鼠PQ中毒后1、3、5天,每日一次给予Sal(1.0mg/kg)腹腔注射,一次1ml生理盐水腹腔注射。F组:UTI+Sa(l0.5mg/kg)治疗组,在大鼠PQ中毒后给予UTI(12万iu/kg),每日二次腹腔注射;大鼠PQ中毒后1、3、5天,每日一次给予Sal(0.5mg/kg)腹腔注射。为保证每日二次腹腔注射,Sal给药时与UTI同时腹腔注射。(注:Sal与UTI同时腹腔注射时,UTI0.5ml、Sal0.5ml,体积共1ml)。G组:UTI+Sal(1.0mg/kg)治疗组,在大鼠PQ中毒后给予UTI(12万iu/kg),每日二次腹腔注射;大鼠PQ中毒后1、3、5天,每日一次给予Sal(1.0mg/kg)腹腔注射。给药策略同F组。观察大鼠一般状态,于中毒后第7d取肺脏,行HE染色观察肺组织形态,免疫组织化学法观察肺组织PERK、P-elF2a、ATF4的表达,用Western blotting法检测肺组织中GRP78、PDI、PERK、P-elF2a、ATF4和CHOP蛋白的表达,行统计学浅析。结果①急性PQ中毒第7天,染毒组肺组织HE染色体现为炎性细胞大量渗出;肺组织中GRP78、PDI、PERK、P-elF2a、ATF4和CHOP蛋白表达较空白对照组高,差别有统计学作用(P0.05)。②GRP78、PDI、PERK、P-elF2a、ATF4和CHOP在空白对照组有基础表达。③UTI治疗组较染毒组炎症反应轻,GRP78、PDI、PERK、P-elF2a、ATF4和CHOP蛋白表达减少或不表达,差别有统计学作用(P0.05)。④Sal(1.0mg/kg)治疗组较染毒组炎症反应重,GRP78、PDI、PERK、P-elF2a、ATF4和CHOP蛋白表达多,差别有统计学作用(P0.05)。⑤Sal(0.5mg/kg)治疗组及Sal((0.5mg/kg、1.0mg/kg)合用UTI治疗组炎症反应、上面陈述的蛋白表达情况介于Sa(l1.0mg/kg)治疗组与UTI治疗组之间,差别均有统计学作用(P0.05)。⑥病死率:空白对照组及UTI治疗组大鼠全部存活,大鼠存活状态尚可。染毒组、Sal(0.5mg/kg)治疗组、Sal(1.0mg/kg)治疗组、UTI+Sal(0.5mg/kg)治疗组、UTI+Sal(1.0mg/kg)治疗组,5组大鼠病死率分别是54.0%、70.0%、88.0%、58.0%、60.0%,各病死率之间比较,Sal(1.0mg/kg)治疗组病死率最高,差别有统计学作用(P0.05);其余四组病死率之间比较,差别无统计学作用(P0.05)。结论①急性PQ中毒诱发ERS,PERK-eIF2a-ATF4信号转导通路增强,发生急性肺损伤;②UTI抑制ERS,使PERK-eIF2a-ATF4信号转导通路中相关蛋白表达减少,减轻急性PQ中毒肺损伤;③Sal增强ERS,使PERK-eIF2a-ATF4信号转导通路中相关蛋白表达增强,加重急性PQ中毒肺损伤。关键词:百草枯中毒论文内质网应激论文乌司他丁论文Salubrinal论文

    摘要4-7

    Abstract7-16

    第1章绪论16-19

    第2章 文献综述19-37

    2.1 急性百草枯中毒的机制及治疗进展19-31

    2.1.1 百草枯的理化特性及毒物代谢动力学19-20

    2.1.2 急性百草枯中毒的机制20-24

    2.1.3 急性百草枯中毒的治疗24-31

    2.2 内质网应激及未折叠蛋白反应的探讨进展31-37

    2.2.1 内质网应激31-32

    2.2.2 UPR 信号通路调控机制32-37

    第3章 实验材料37-41

    3.1 实验动物37

    3.2 主要药品与来源37-38

    3.3 需配制的试剂38-39

    3.4 仪器39-41

    第4章 实验策略41-48

    4.1 动物模型制备41-42

    4.2 实验步骤42-46

    4.2.1 石蜡切片制作基本历程42

    4.2.2 HE 染色42-43

    4.2.3 免疫组织化学法检测 PERK、P-EIF2A、ATF4 的蛋白表达43-44

    4.2.4 WESTERN BLOTTING检测 GRP78、PDI、PERK、P-EIF2A、ATF4、CHOP 的蛋白表达44-46

    4.3 统计学处理46-48

    第5章 实验结果48-62

    5.1 大鼠中毒体现及死亡情况48-49

    5.2 肺组织病理转变49-50

    5.3 肺组织免疫组化结果50-54

    5.4 肺组织 WESTERN BLOTTING结果54-62

    5.4.1 Western blotting 法检测大鼠肺组织中 GRP78 蛋白的表达54-55

    5.4.2 Western blotting 法检测大鼠肺组织中 PDI 蛋白的表达55-56

    5.4.3 Western blotting 法检测大鼠肺组织中 PERK 蛋白的表达56-58

    5.4.4 Western blotting 法检测大鼠肺组织中 P-eIF2a 蛋白的表达58-59

    5.4.5 Western blotting 法检测大鼠肺组织中 ATF4 蛋白的表达59-60

    5.4.6 Western blotting 法检测大鼠肺组织中 CHOP 蛋白的表达60-62

    第6章 讨论62-72

    6.1 急性 PQ 中毒诱导 ERS 及 UPR63-66

    6.2 急性 PQ 中毒对 PERK-EIF2A-ATF4 信号转导通路的影响66-68

    6.3 UTI 对 PERK-EIF2A-ATF4 信号转导通路的影响68-69

    6.4 SAL对 PERK-EIF2A-ATF4 信号转导通路的影响69-72

    第7章 结论72-73

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